Biosrfactantes
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RUTA BIOTECNOLÓGICA DE
PRODUCCIÓN DE BIOSURFACTANTES
MICROBIANOS A PARTIR DE RESIDUOS
AGROINDUSTRIALES
A partir del aislamiento de cepas de
hongos o bacterias preferentemente de
ambientes contaminados, se realiza la
selección de las cepas microbianas
potencialmente productoras de BS mediante
el cultivo en agar con medios selectivos y
diferenciales, particularmente se busca la
actividad hemolítica, los halos del crecimiento
de las colonias microbianas sobre el agar,
proporcionan información sobre posibles
cepas candidatas productoras de
biosurfactantes.
Posteriormente las cepas seleccionadas
son adaptadas a crecer en condiciones de
laboratorio en medio líquido, para ello es
indispensable evaluar fuentes de carbono
adecuadas. Se conoce que los
biosurfactantes son sintetizados a partir de
parafinas, sin embargo recientemente se
emplean residuos provenientes de la
agroindustria (plaguicidas y residuos de
cosechas agrícolas) ya que son materia
prima barata, accesible y paralelamente
permite abatir un problema de
contaminación, ver tabla 3 (Cassidy & Hudak,
2001; Kitamoto et al., 2002; Abasi et al.,
2011; Abasi et al., 2013). Las materias
primas como la glicerina residual y residuos
de aceites vegetales, podrían ser viables
para la producción de biosurfactantes, en
función de las altas concentraciones que se
obtienen. En condiciones de laboratorio, se
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ha reportado que la limitación en nitrógeno
estimula la producción de BS, por ésta razón
se debe considerar al momento de la
elaboración del medio de cultivo (Ron &
Rosenberg, 2001). Abbasi et al. (2011),
demostraron la producción de biosurfactantes
a partir de residuos de frutas, aceites
vegetales y residuos de la industria de
alimentos. En su estudio la cepa de
Pseudomonas aeruginosa MA01 logró la
producción de biosurfactantes (glucolípidos)
en12 g/l y un índice de emulsificación del
50%.
Tabla 3. Fuentes de carbono y concentración final de biosurfactantes microbianos
Biosurfactante Microorganismo Concentración
final (g l
-1
)
Fuente
de Carbono
Manosileritritol lípido
MEL-A,-B and –C Candida antarcitica T-34 140 n-Octadecano
47 Aceite de soya
MEL-SY16 C. Antarctica KCTC 7804 41 Glycerol, ácido
oleico
Ramnolípido
RL-1, -2, -3 Pseudomonas sp. DSM 2874 15 n-Tetrdecano
RL-1 y-2 P. aeruginosa DSM 7107 112 Aceite de soya
RL-1 y-2 P. aeruginosa UI 29791 46 Aceite de maíz
RL-A y-B P. aeruginosa BOP 101 14 n-Parafina
Trehalosa lípido
Trehalosa-tetraester R. erythropolis DSM 43215 32 n-Decano
STL-1 y-2 R. erythropolis SD-74 40 n-Hexadecano
Celobiosa lípido
CL-A, -B y –C Ustilago maydis ATCC 14826 16 Aceite de coco
Soforosa lípido
SL mezcla C. bombicola ATCC 22214 422 Suero de leche
SL mezcla C. bombicola CBS 6009 317 Glucosa esteres
SL mezcla (SL-1: 73%) C. bombicola ATCC 22214 160 Aceite de canola
SL (lactona) C. apicola IMET 43747 90 Aceite de girasol
Fuente: Modificado de Kitamoto et al. 2002.
Adicionalmente deben establecerse las
condiciones de cultivo óptimas de agitación,
pH, temperatura y tiempo de incubación. En
el caso del cultivo a escala de laboratorio de
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P. aeruginosa y Klebsiella sp., se realizan
bajo condiciones aerobias y mesófilas en
cultivos en lote con cinéticas de alrededor de
70 horas (Lee et al., 2008; Arutchelvi et al.,
2011).
Para
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