Dermatofitos
fedor153 de Julio de 2014
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INTRODUCCION
Microsporum canis es un hongo patógeno con distribución mundial, que causa la “tinea capitis” en animales y seres humanos. Microsporum canis también causa infección invasiva en pacientes inmunocomprometidos. Para desafiar a la infección por hongos patógenos, el sistema inmune innato de acogida es la primera línea de defensa.
Microsporum canis es un hongo zoophilic y es un agente importante de dermatofitosis. Los gatos actúan como importantes reservorios. Clínicamente, es muy difícil diferenciar dermatofitosis causada por varias especies, también este hongo pierde sus características morfológicas con facilidad debido a la subcultura; por lo que el uso de las técnicas rápidas y precisas de laboratorio para la identificación de los dermatofitos es importante.
OBJETIVOS
GENERAL: Identificar al Microsporum canis, variedad canis, a través de raspados cutáneos de gatos, para conocer micro y macroscópicamente al dermatofito.
ESPECÍFICOS: (muestra, medio de cultivo, tinción)
Obtener la muestra, mediante un raspado del borde de la lesión cutánea, para aislar al microorganismo.
Preparar el medio de cultivo “Agar Sabouraud Dextrosa”, de acuerdo a las instrucciones de la casa comercial, para el desarrollo de Microsporum canis, variedad canis.
Aplicar la tinción correspondiente con el método adecuado, para observar microscópicamente la muestra.
MATERIALES
BIOLÓGICOS
• Cultivos microbiológicos.
FÍSICOS
• Mandil
• Guantes
• Cubre boca
• Hoja de bisturí
• Mechero
• Lápiz graso
• Autoclave
• Pipetas
• Varillas de Agitación
• Cajas de Petri
• Papel de aluminio
• Balanza analítica
• Porta y cubre objetos
• Papel manteca
• Etiquetas adhesivas
• Cinta Scotch
• Micrómetro ocular y objetivo
• Microscopio óptico
• Esmalte de uñas
QUÍMICO
• Alcohol
• Agar Sabouraud Dextrosa
• Cristal violeta
• Alcohol acetona
• Safranina
• Jabón
METODO
1. Con la ayuda del bisturí, realizar el raspado del borde de la lesión del gato.
2. Colocar en la caja Petri estéril.
3. Preparar el Agar Sabouraud Dextrosa, y colocar la muestra en el mismo para que el microrganismo empiece su desarrollo.
4. Después de 7 días, se observa el crecimiento de 3 colonias.
5. Tomamos una muestra de cada colonia y dejamos caer en la porta objetos.
6. Añadimos una gota de cristal violeta, colocamos el cubre objetos y nos ayudamos con la parte superior del lápiz (borrador de goma), para que la muestra se adhiera al portaobjetos.
7. Sellamos el cubre objetos contra el portaobjetos con el esmalte de uñas.
8. Llevamos la muestra al microscopio.
RESULTADO
CONCLUCION
RECOMENDACIONES
• Disponer de un espacio libre en la pared, para instalar estanterías, algún armario de oficina y casilleros para maletas de los alumnos.
• El laboratorio debe disponer de botiquín de primeros auxilios debidamente equipado.
• Es importante trabajar en concentración, y llevar cuidado para no provocar llamaradas ni sufrir quemaduras.
• Apagar siempre el mechero bunsen cuando se va a abandonar la mesa de trabajo.
• Al laboratorio se debe acudir con bata blanca, cubre bocas, guantes quirúrgicos.
• Al concluir cada sesión deberás asegurarte de que los materiales de desecho, u otros objetos contaminados los hayas colocado en los recipientes específicos para ello.
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