Comparación del metabolismo aeróbico y anaeróbico

“Año del Bicentenario del Perú: 200 años de Independencia”  

UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO

FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

ESCUELA DE MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA

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“Comparación del metabolismo aeróbico y anaeróbico”

INTEGRANTES

CURSO

Fisiología y genética bacteriana

DOCENTE

Zavaleta Verde, David

CICLO Y SECCIÓN

VI – A

TRUJILLO – PERÚ

2022

COMPARACIÓN DEL METABOLISMO AERÓBICO Y ANAERÓBICO

1. Introducción

Las exigencias de oxígeno de una bacteria en particular reflejan en parte el tipo de metabolismo productor de energía. De acuerdo a su relación con el oxígeno tenemos:

Respiración aeróbica, se refiere a aquellos organismos que utilizan oxígeno como aceptor final de electrones. Este patrón respiratorio bacteriano es el mismo que utilizan los humanos. (Margulis & Sagan, 1995).

Por otro lado, la respiración anaeróbica se caracteriza por no necesitar el oxígeno es por ello que se utilizan otros aceptores de electrones terminales tales como el nitrato, sulfato, CO2, ion férrico, etc. Pero a su vez las bacterias anaeróbicas emplean coenzimas que se reoxidan en la cadena transportadora de electrones que ayudan en la acepción final de los electrones, en el caso de Proteobacteria utilizan el nitrógeno como aceptor final de electrones, mientras que el género Desulfovibrio y algunas especies de Clostridium utilizan el sulfato como su aceptor final de electrones y en el caso de las arqueas que su aceptor final es el CO2 la reducción lo convierte en metano. (Murray, et al., 2021)

En la fermentación un compuesto orgánico se comporta como aceptor y dador de electrones esto significa que no utilizan una cadena de transporte de electrones para oxidar NADH, sino que se utiliza una fosforilación a nivel de sustrato que es un método alternativo para usar esta energía reductora y mantener una fuente de para el funcionamiento apropiado de las rutas metabólicas normales. (Madigan, et al., 2015)

Competencia(s)

Explica y compara el metabolismo aeróbico y anaeróbico de la bacteria, de acuerdo a las condiciones ensayadas con responsabilidad social.

1. Material y procedimiento

1. Material biológico

• Cultivo joven de Escherichia coli.

1. Material y equipo de laboratorio

• Biorreactor aireado
• Biorreactor anaeróbico
• Placas petri
• Pipetas de 1,5 y 10 mL
• Tubos de ensayo 13 x 100 mm
• Matraz de 250 mL
• Balón de 500 mL

1. Medios de cultivo y reactivos

• Agar nutritivo
• Caldo nutritivo
• Solución salina fisiológica estéril (SSFe)
• Vaselina líquida estéril

1. Procedimiento

• Inoculación de los biorreactores

A cada uno de los biorreactores, conteniendo 195 mL de Caldo nutritivo-KNO3 al 0.5% y glucosa al 0.5%, inocular 5 ml de suspensión de Escherichia coli equivalente a el tubo N° 3 del nefelómetro de Mac Farland. Al biorreactor estático se le agregará una capa de vaselina estéril.

• Determinación de densidad óptica, biomasa y consumo de glucosa

De los biorreactores, muestrear 5 mL a las 0, 2, 4, 6, 8, 10 y 12 horas, medir la densidad óptica a 560 nm y centrifugar a 2500 rpm durante 20 minutos, separar el sobrenadante para medir la concentración de la glucosa a 505 nm. Llevar el sedimento a la estufa a 60-70°C por 60 minutos, luego se pesa tarando previamente los tubos.

Con los datos obtenidos construir la curva de Densidad Óptica, consumo de glucosa y Peso seco en papel milimetrado.

1. Resultados

Tabla 01. Datos obtenidos en el biorreactor aireado y anaeróbico del parámetro densidad óptica.

Gráfica 01. Curva de los datos obtenidos en el biorreactor aireado y anaeróbico del parámetro densidad óptica.

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Tabla 02. Datos obtenidos en el biorreactor aireado y anaeróbico del parámetro peso seco.

Gráfica 02. Curva de los datos obtenidos en el biorreactor aireado y anaeróbico del parámetro peso seco.

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Tabla 03. Datos obtenidos en el biorreactor aireado y anaeróbico del parámetro consumo de glucosa.

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