Evaluación de dos sistemas de cultivo larval (Flujo Continuo y Recirculación). En relación a la supervivencia y crecimiento de larvas y juveniles de abalón rojo (Haliotis rufescens, Swainson 1822).
Gonzalo HuezTesis30 de Noviembre de 2017
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[pic 1] Evaluación de dos sistemas de cultivo larval (Flujo Continuo y Recirculación). En relación a la supervivencia y crecimiento de larvas y juveniles de abalón rojo (Haliotis rufescens, Swainson 1822). Gonzalo Ignacio Sepúlveda Huez Profesor Guía: Juan Enrique Illanes Bücher
Coquimbo, Octubre, 2009. |
Evaluación de dos sistemas de cultivo larval (Flujo Continuo y Recirculación). En relación a la supervivencia y crecimiento de larvas y juveniles de abalón rojo (Haliotis rufescens, Swainson 1822). Por: Gonzalo Ignacio Sepúlveda Huez Departamento de Acuicultura Fecha : Aprobado Comisión de Calificación __________________________________ Julio Vásquez Castro Decano __________________________________ Juan Enrique Illanes Bücher Profesor Guía __________________________________ Shizuo Akaboshi Profesor Corrector __________________________________ Luis Pereira Chávez Profesor Corrector Memoria entregada como un requisito para obtener el título de Ingeniero en Acuicultura, en la Facultad de Ciencias del Mar. Universidad Católica del Norte. Sede Coquimbo. 2009. |
[pic 2]
Evaluación de dos sistemas de cultivo larval (Flujo Continuo y Recirculación). En relación a la supervivencia y crecimiento de larvas y juveniles de abalón rojo (Haliotis rufescens, Swainson 1822).
Actividad de Titulación presentada para optar al Título de Ingeniero en Acuicultura. |
Gonzalo Ignacio Sepúlveda Huez
Coquimbo, Octubre, 2009.
RESUMEN.
El objetivo del presente trabajo fue evaluar dos sistemas de cultivo larval para Haliotis rufescens, en relación a la supervivencia y crecimiento de larvas y juveniles. La metodología fue la siguiente: Se seleccionaron 20 hembras y 5 machos reproductores, con una longitud promedio de 12 ± 2 cm y un avanzado estado de maduración (GI 3), según la escala de Uki (1989). Dichos reproductores, fueron inducidos a la evacuación de gametos (Desove), según el procedimiento utilizado por Uki y Kikuchi (1974). Una vez concluido el desove, se procedió con la fertilización y posteriormente el cultivo embrionario. Acto seguido, 18 hrs después de ocurrida la fertilización, las larvas trocóforas fueron repartidas en los dos diferentes sistemas de cultivo larval (Flujo continuo y Recirculación). Ambos tratamientos poseían 3 réplicas.
Durante el desarrollo larval, se registraron diariamente las variables abióticas (T°, OD y pH), además se determinó la concentración de Vibrio spp. La supervivencia y el crecimiento larval, fue registrada periódicamente durante todo el desarrollo larval y la supervivencia y crecimiento de juveniles se calculó 34 días después de realizarse el asentamiento larval.
La supervivencia larval para cada tratamiento fue de 61,22% para los sistemas con flujo continuo y 67,54% para los sistemas con recirculación. Las mayores tasas de crecimiento fueron registrados en los sistemas con flujo continuo, con un incremento de talla de 79 µm. Mientras que los sistemas con recirculación registraron un valor promedio de 74 µm (desde larva trocófora a veliger tardía).
Después de 34 días de la incorporación de las larvas competentes a los estanques tipo “race-way”, la supervivencia se mantuvo superior para los juveniles que provenían desde los sistemas con recirculación, el porcentaje de supervivencia promedio fue de 2,4% y 1,64% para los juveniles que provenían desde los sistemas con flujo continuo. De igual manera, la tasa promedio de crecimiento diaria para los juveniles que provenían desde los sistemas con flujo continuo fue de 0,38% y 0,33% para los juveniles que provenían desde los sistemas con recirculación.
Ambos registros (supervivencia y crecimiento), ya sea en larvas como en juveniles, no registraron diferencias estadísticas significativas entre los tratamientos (P > 0,05) (ANDEVA).
SUMMARY.
The goal of this work was to evaluate the survival, growth and settlement of the Haliotis rufescens larvae which were cultivated in two different systems. The methodology was as it follows: 20 female and 5 breeder males, with an average length of 12 ± 2 cm and an advanced maturing state (GI 3), according to the Uki scale (1989). The afore mentioned breeders were induced to the gamete evacuation (Spawn), according to the procedure used by Uki y Kikuchi (1974). Once the spawn is concluded, the fertilization and embryonic cultivation. Then, 18 hours after the fertilization took place, the trocophore larvae were distributed among the two different larval cultivation Systems (continuous flow and Recycling). Both treatments had 3 replies.
During the larval development, abiotic variables were registered on a daily basis (T°, OD and pH), besides, the concentration of Vibrio spp was determined. The larval survival and growth was periodically registered during the whole larval development and the survival of juveniles was calculated 34 days after the larval settling was done.
The survival for each treatment was 61,22% for the continuous flow systems and 67,54% for the recycling systems. The highest growth rates were registered in the continuos flow, with a size increase of 79 µm. while the recycling systems registered an average of 74 µm (from trocophore larva to slow veliger).
After 34 days of the competent larvae incorporation to the “race-way” type ponds, the survival was higher for the juveniles that came from the recycling systems. The average survival percentage was 2,4% and 1,64% for the juveniles that came from the continuous flow systems. The daily growing rate for the juveniles that came from the continuous flow was 0,38% and 0,33% for the juveniles that came from the recycling systems.
Both registries (survival and growth), whether in larvae as well as juveniles, did not register any meaningful statistical differences in between treatments (P > 0,05) (ANDEVA).
AGRADECIMIENTOS.
Agradezco a DIOS sobre todas la cosas, por darme la confianza de superación y de saber que la fe, realmente existe. A mi sabia abuela Nancy, “mi nona”. Por sus miles de acertados consejos, que me hacen ser una mejor persona y me guían por buen camino. A mi madre Silvana, que por su gran apoyo y sus necesarios “empujones”, me han hecho ser, lo que hoy soy. A mi tío Carlos, pilar fundamental para mi educación. A mi polola Macarena, por confiar en mis capacidades y darme una hija hermosa “chanchita”. A mi familia en general (tíos, tías, primos y primas).
Agradezco especialmente a mi primo y amigos. Cristian, Juan y Carlos (niños, realmente gracias por todo). A Alex, por su ayuda incondicional. A márcelo, por su gran apoyo y responsabilidad.
Agradezco al Staff de Comercial Panamericana Seafood. Principalmente a Luis y Aldo, por darme la oportunidad y confianza, para poder realizar mí experimento. A Paula, por su gran apoyo.
Y para finalizar, agradezco plenamente a mi profesor guía, Juan Enrique.
MUY AGRADECIDO!!!
..::zkore::.
ÍNDICE GENERAL.
1. INTRODUCCIÓN 11
2. OBJETIVOS 15
2.1. Objetivo general 15
2.2. Objetivos específicos 15
3. MATERIALES Y MÉTODOS 16
3.1. Instalación y financiamiento 16
3.2. Desove 16
3.2.1. Selección de reproductores 17
3.2.2. Inducción a la evacuación de gametos (Desove) 18
3.2.3. Fecundación 20
3.2.4. Desarrollo embrionario – Eclosión larval 20
3.3. Sistemas de cultivos larvales 21
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