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1. INTRODUCCIÓN

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2. OBJETIVO

- Comprobar la presencia de N, Ca, P y Mg en tallos, hojas y ceniza de plantas.

3. MATERIALES

- Biológicos: hojas y tallos de plantas.

- Equipos: microscopio, mufla.

- Reactivos: difenilamina, solución saturada de MgSO4, H2SO4 al 1%, HCl al 10%, amoniaco al 25%, HNO3, NH4Cl, Na2HPO4 al 1%, agua destilada,

- Vidrieria y porcelana: crisoles, 1 tubo de ensayo, pipetas, porta y cubreobjetos, 2 beaker de 100cc, agitador

- Otros: 1 círculo de papel filtro, pincel, cuchilla

METODOLOGÍA

- Obtención de cenizas y preparación de la muestra

Calcine por media hora en un crisol, una pequeña cantidad de tallos y hojas de cualquier planta. Las cenizas se introducen en un tubo de ensayo. Agregue 2 a 3 ml de una solución de HCl al 10%. Filtre la solución obtenida.

- Identificación de macroelementos

En la solución ácida determine la presencia de:

Calcio : En un portaobjetos agregue unas gotas de la solución del ensayo con unas gotas de H2SO4 al 1%. Observe al microscopio, los cristales de yeso que se presentarán en forma de agujas. La reacción es la siguiente

CaCl2+H2SO4 CaSO4 +HCl

Magnesio : En un portaobjetos agregue unas gotas de la solución del ensayo y neutralice con una gota de amoniaco; luego mézclela con una gota de fosfato de sodio. Observe que al microscopio los cristales de fosfato de amonio y magnesio son de diferentes formas (cuadrados, rectangulares, estrellados, etc).

MgCl2+ Na2HPO4+NH4OH Mg(NH4)PO4 +NaCl+H2O

Fósforo : realice un corte transversal de la nervadura principal de la hoja. Trate de que el corte sea lo más fino posible. Colóquelo en un beaker con agua. Tome 12 ml de solución saturada de MgSO4 y añádale 1 ml de solución saturada de NH4Cl y 7 ml de agua destilada. Monte los cortes con un pincel, colóquelos en un portaobjetos, agregue unas gotas del reactivo y observe. Se formarán cristales de fosfato doble de amonio y magnesio.

Nitrógeno: (NO3-): disuelva un gramo de difenilamina en 100ml de H2SO4. Tome un pedazo de tallo y córtelo longitudinalmente por el medio. Aplique unas gotas del reactivo al corte y observe; deberá desarrollar un color azul; tanto más intenso sea el color, más nitrógeno está presente en los tejidos.

5. RESULTADOS

Realice dibujos a colores de las observaciones hechas de los cortes vistos al microscopio con sus respectivas explicaciones. Realice comparaciones y discuta.

6. CUESTIONARIO

- Al calcinar la materia orgánica que elementos fundamentales se pierden?

- Cuál es la función de cada uno de estos elementos en la planta?

- Qué sintomatología presenta la planta en deficiencia de estos elementos?

- Comente la movilidad y el comportamiento de acuerdo al pH de estos elementos.

- Qué es antagonismo y sinergismo y cómo se manifiesta con respecto a estos elementos.

7. BIBLIOGRAFÍA

- FASSEBENDER, H.W. 1982. Química de suelos, con énfasis en suelos de América Latina. IICA. San José.

- PRIMAVESI, A. 1982. Manejo ecológico del suelo. Ed. El Ateneo. 5a Edición. Buenos Aires.

- RUSELL, J. & RUSELL, W. 1964. Las condiciones del suelo y el desarrollo de la planta. Aguilar S.A. 3ª. Edición. Madrid

- SALISBURY, F & ROSS, C. 1994. Fisiología vegetal. Grupo Editorial Iberoamérica. México

FACULTAD DE CIENCIAS BÁSICAS

PROGRAMA DE BIOLOGIA

BIOLOGÍA GENERAL

PRACTICAS DE LABORATORIO

TEJIDOS VEGETALES

1. INTRODUCCIÓN

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2. OBJETIVOS

- Reconocer algunos tejidos presentes en los vegetales

- Comprobar que la agrupación de células en tejidos está relacionada con la función que cumplen dentro de la planta.

- Realizar cortes a mano alzada como herramienta importante en el estudio morfológico de tejidos.

- Reconocer que tejidos son comunes a hoja, tallo y raíz.

- Diferenciar morfológicamente una planta monocotiledónea de una dicotiledónea.

3. MATERIALES

- Biólogicos: hojas, tallo y raíz de maíz (Zea mays), caña de azúcar (Saccharum officinarum) u orquídea, hojas, tallo y raíz de cilantro ó croto (Codiaeum variegatum).

- Reactivos: Sol. De tionina al 1% y agua acidulada con HCl

- Equipos: microscopio

- Otros: textos de histología vegetal, papel absorbente, portaobjetos, laminillas, gotero, bisturí o cuchillas de afeitar nuevas, trozos de pauche o icopor, pincel delgado.

4. METODOLOGÍA

- Corte transversal y longitudinal de hoja de monocotiledónea y de dicotiledónea.

Realice cortes transversales de hoja muy finos con la cuchilla de afeitar. El corte debe incluir tanto la lámina foliar como la nervadura central. Si desea puede hacer el corte tomando un fragmento de hoja entre dos láminas de icopor o pauche humedecido a manera de emparedado. Seleccione los mejores cortes ( los más transparentes) y colóquelos en una caja de Petri con agua. Tome

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