PRACTICAS DE LABORATORIO. MICROALGAS

PRACTICA 1

MICROALGAS

OBJETIVO: Reconocer organismos y  características morfológicas de las diferentes divisiones de microalgas

MATERIAL:

Microscopio compuesto

Aceite de inmersión

Preparaciones fijas

Cubreobjetos                            

Portaobjetos

Pipetas Pasteur

Muestras de agua

METODOLOGÍA:

Observación de preparaciones fijas:

1.- Colocar una preparación en el microscopio compuesto, enfocar a 10x, esquematizar

2.- Enfocar a 40x, esquematizar

3.- Poner una gota de aceite de inmersión sobre la preparación y enfocar a 100x, esquematizar

Observación de preparaciones frescas:

1.- Tomar un poco de muestra con la pipeta Pasteur (desde el fondo)

2.- Colocar dos gotas en un portaobjetos, colocar el cubreobjetos

4.- Colocar la preparación en el microscopio, enfocar a 10x, esquematizar

5.- Enfocar a 40x, esquematizar

6.- Observar por lo menos 4 preparaciones, siguiendo el mismo procedimiento

RESULTADOS:

Los resultados deben ser reportados de la siguiente manera:

• Los esquemas son a lápiz, sin color, sin poner el círculo que corresponde al campo. Máximo 4 esquemas por hoja
• Todo esquema debe llevar el objetivo al que se observo, división y género.

Si es el caso, las estructuras observadas deben de señalarse.

PRACTICA 2

MACROALGAS

OBJETIVO: Reconocer algunas características morfológicas de rodófitas y feofitas.

MATERIAL:

Microscopio estereoscopico

Cajas de petri

Pinzas

Material biológico

METODOLOGÍA:

1.- Tomar un ejemplar con ayuda de las pinzas, colocarlo en una caja petri

2.- Colocar la caja petri en el microscopio, enfocar

3.- Esquematizar

4.- Observar 4 ejemplares de cada división

 RESULTADOS:

Los resultados deben ser reportados de la siguiente manera:

• Los esquemas son a lápiz, sin color, sin poner el círculo que corresponde al campo. Máximo 4 esquemas por hoja
• Todo esquema debe llevar el objetivo al que se observo y el nombre de la división a la que pertenece
• Si es el caso, las estructuras observadas deben de señalarse

PRACTICA 3

BRIOFITAS

OBJETIVO: Conocer la morfología de las fases gametofitica y esporofitica de los briofitos

MATERIAL:

Microscopio estereoscopico

Microscopio compuesto

Cajas de petri

Portaobjetos

Cubreobjetos

Navaja de afeitar

Material biológico

METODOLOGÍA:

Fase gametofitica:

1.- Tomar un ejemplar colocarlo en una caja petri

2.- Colocar la caja petri en el microscopio estereoscopico, enfocar

3.- Esquematizar

4.- Observar 2 ejemplares de cada clase

Fase esporofitica:

1.- Tomar un esporofito, colocarlo en una caja petri

2.- Colocar la caja petri en el microscopio estereoscopico, enfocar

3.- Esquematizar

4.- Observar 2 ejemplares de cada clase

Observación de esporas:

1.- Hacer un corte longitudinal de la caliptra, colocarla en un portaobjetos, cubrir con el cubreobjetos

2.- Poner la preparación en el microscopio compuesto

3.- Enfocar a 10x y 40x

4.- Esquematizar

RESULTADOS:

Los resultados deben ser reportados de la siguiente manera:

• Los esquemas son a lápiz, sin color, sin poner el círculo que corresponde al campo. Máximo 4 esquemas por hoja
• Todo esquema debe llevar el objetivo al que se observo, división, género o especie
• Si es el caso, las estructuras observadas deben de señalarse

PRACTICA  4

EQUISETOPHYTA

OBJETIVO: Observar las diferentes estructuras que conforman el esporofito de los equisetos

MATERIAL:

Microscopio estereoscopico

Caja petri

Navaja de afeitar

Ejemplares biológicos

METODOLOGIA:

1.- Tomar un ejemplar, observarlo a simple vista y a través del microscopio estereoscópico

2.- Realizar cortes longitudinales y transversales a cada una de las estructuras del organismo y observarlas al microscopio

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