Musculo liso

Universidad Nacional Autónoma de México[pic 1][pic 2]

Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán

Medicina Veterinaria y Zootecnia

Fisiología general

Práctica 4. Músculo liso

Integrantes:

• Tadeo Vázquez Emmanuel
• Vichique Carrillo Sugey Mishary 
• Zetina Marquez Ximena Michelle 
• Zúñiga Linares Ximena Alejandra

Equipo 8

Profesores:

Biol. MVZ. Areli Castillo Ibarra

MVZ. Víctor David González Fernández

MVZ. María De La Luz Montero Villeda

Índice

Introducción        2

Marco teórico        3

Material        4

Metodología        5

Resultados        8

Discusión        9

Conclusión        10

Bibliografía        11

Introducción

El músculo liso se encuentra presente en todos los órganos internos; vagina, útero, piel, órganos del aparato digestivo, bronquios, también podemos encontrarlo en algunos músculos del ojo, específicamente en los que activan el iris y en arterias como la aorta.

Está especializado en contracciones lentas y relativamente débiles, aunque es resistente y capaz de contraerse por un periodo prolongado de tiempo sin mostrar señales de agotamiento. Es un músculo involuntario, ya que su funcionamiento se encuentra bajo el control del sistema nervioso autónomo.

Sus células son en forma de huso, cada una tiene un único núcleo alargado localizado en el centro del sarcoplasma. Contiene las proteínas actina y miosina, pero estas no se organizan en miofibrillas, esta es la razón de ausencia de estriaciones. Este tipo de tejido muscular, a diferencia de los estriados, carecen de troponina, en su lugar se encuentra la calmodulina.

La membrana celular rodea a las células y les da forma, esta contiene pequeñas bolsas como invaginaciones llamadas caveolas, las cuales son funcionalmente equivalente a los túbulos T del musculo estriado. Sus células, a diferencia del esquelético, no se orden en paralelo unas con las otras, sino en diferentes direcciones.

Una característica de estas células es que contienen estructuras llamadas cuerpos densos, localizados cerca de la membrana celular, estos son los responsables de engrosar los filamentos de actina, función análoga a la de los discos Z en el musculo esquelético. Estos cuerpos de conectan a células adyacentes por medio de puentes intercelulares, lo que habilita a las células musculares lisas a contraerse juntas. Los filamentos de miosina descansan entre los de actina, estos filamentos son mucha mas gruesos, pero en menor cantidad que los de actina. Además de estos, las células de este tejido también contienen filamentos intermedios de desmina y vimentina cuya función es la de soporte a la estructura celular.

El musculo liso tiene diversas funciones en el cuerpo; se encuentra en casi todos los sistemas del cuerpo como órganos huecos; tales como el estómago y la vejiga, en estructuras tubulares; vasos, conductos biliares, en esfínteres, útero, ojo, etc.

• Sistema digestivo: Propulsión de la comida por los intestinos.
• Sistema cardiovascular: Regular la presión sanguínea.
• Sistema urinario: Regulación del flujo urinario y micción.
• Sistema reproductivo: Contracciones uterinas durante el embarazo y parto (hembras) propulsión del esperma (machos).
• Sistema respiratorio: Regulación del diámetro de los bronquiolos.

Marco teórico

Existen dos tipos de musculo liso;

• Multiunitario: Está formado por fibras musculares separadas una de la otra, cada una de ellas actúa de forma independiente de las demás, es decir; una puede contraerse sin necesidad de que otra se contraiga y su control se ejerce principalmente por señales nerviosas. En este tipo de musculo, cada fibra esta inervada por una única terminación nerviosa, de manera que cada una cuenta con su terminación nerviosa.

El musculo liso multiunitario se encuentra en el musculo ciliar del ojo, del iris del ojo y en los piloerectores.

• Unitario:

Material

Material que proporciona el Laboratorio

Reactivos, fármacos y soluciones:

1. Acepromacina
2. Tiletamina + Zolacepam
3. Lidocaína
4. Pilocarpina o acetilcolina.(Ach)
5. Adrenalina.
6. Oxitocina.
7. Estrógenos
8. 2 Frascos gotero con solución Ringer.

Material diverso

1. 1 Tabla para disección de roedores.

Equipo de Laboratorio:

1. Equipo de registro digital Biopac MP-35.
2. Captor de fuerza para Biopac.
3. 1 Soporte Universal.
4. 1 Nuez.
5. Fisiógrafo con Unidad Estimuladora.
6. Juego de cables para Fisiógrafo.
7. Extensión de caimanes para la unidad estimuladora.
8. Baño María con termómetro.

Material que debe traer el alumno

1. 1 Rata hembra cepa Wistar de aproximadamente 250 g de peso.
2. 2 agujas para acupuntura de 10-15 centímetros
3. Estuche de disección.
4. 6 Jeringas para insulina.
5. Papel sanitario.
6. 1 Tubo de hilo de algodón.
7. 1 Tubo de hilo cáñamo.
8. Guantes de látex.
9. Cubre bocas.
10. Gasas.
11. Jabón.
12. Hoja para rasurar.

1. m)Franela y líquido para desinfectar

Metodología

1. Enciende el regulador y posteriormente enciende la computadora.
2. Espera a que se abra el escritorio.
3. Por el ángulo izquierdo del Biopac MP-35, desliza tu mano izquierda y en la parte posterior tocarás el botón de encendido, sin sacar el Biopac MP-35, oprímelo.
4. Observa el encendido de las lámparas Busy y Power, la lámpara Busy debe parpadear y después de algunos segundos permanecer apagada.
5. Teniendo apagada la lámpara indicadora de Busy, da doble click en el ícono “BSL PRO 3.7 .Ink” del escritorio de la computadora para abrir el programa del Biopac MP-35
6. Abierto el programa, localiza en la barra superior el ícono MP35.
7. Da un click y aparecerá un cuadro de diálogo
8. Da un click en Set up channels, se abrirá otra ventana donde verás que en el CH 1 se encuentra conectado tu captor.
9. A la derecha de ese renglón localiza un cuadro con un triángulo negro, da un click en este para poder tener acceso a las diferentes calibraciones de registro. Localiza la indicada por el profesor del laboratorio
10.  Elige la opción “Force (0-100 grams)”
11. Señalada la opción de trabajo, cierra el cuadro de diálogo.
12. Repite las instrucciones del paso 7 y selecciona la opción Set up Acquisition.
13. En el cuadro abierto puedes elegir la duración de tu registro, el profesor de laboratorio profundizará sobre este aspecto, una vez fijada la duración de tu registro, cierra el cuadro de Set up Acquisition.
14.  El profesor te asignará el protocolo de analgesia y anestesia para la rata
15.  Sujete a la rata a la tabla de disección de la forma acostumbrada en posición decúbito dorsal.
16.  ) Efectué la tricotomía de la piel del área ventral del cartílago xifoides a la sínfisis púbica, aproximadamente un área de 4 x 3 cm.
17.  Incida con el bisturí sobre la línea media del abdomen hasta alcanzar la cavidad abdominal.
18.  Identifique rápidamente hígado, intestino delgado, intestino grueso, vejiga urinaria y cuernos uterinos.
19.  Por incisión roma traspase el mesenterio de una asa de intestino delgado que se encuentre vacía, y deslice un hilo de algodón, anude los cabos libres del hilo de algodón, no los amarre sobre el intestino. Realice la misma maniobra en ambos cuernos uterinos. Aplique sobre los cuernos uterinos 3 gotas de estrógenos con la jeringa de insulina
20.  Coloque el cabo anudado del intestino delgado en el porta especímenes del captor.
21.  Localiza en pantalla el Show/Hide Journal y realiza los ajustes necesarios de identificación de la práctica.
22.  Teniendo todo listo, inicia el registro de la actividad de músculo liso de la rata, presiona START.
23.  Normaliza el registro primero con “Vertical Autoscale”, posteriormente con “Horizontal Autoscale”.
24.  Una vez estabilizada la actividad del intestino, obtenga un registro de 120 segundos, aplique posteriormente Ringer a 4° C, y registre el efecto durante 120 segundos, utiliza marcadores en cada actividad.
25.  Aplique posteriormente Ringer 40°C, registre el efecto durante 120 segundos, anote la respuesta observada
26.  Aplique 0.05 ml de pilocarpina localmente por goteo con la jeringa para insulina, registre el efecto durante 5 a 10 minutos, anote la respuesta observada y posteriormente lave con algunas gotas de Ringer a 40°C.
27.  Aplique 0.05 ml de adrenalina localmente por goteo con otra jeringa limpia para insulina, registre el efecto durante 5 a 10 minutos, anote la respuesta observada y posteriormente lave con algunas gotas de Ringer 40°C.
28.  Inserta las agujas para acupuntura en la muestra de intestino, una a cada lado del hilo de algodón y coloque los caimanes en los extremos de dichas agujas
29.  Aplique una serie de estímulos continuos con una duración de 10 ms, una intensidad de 7 volts y una frecuencia de 1 pps, 5 pulsos con descanso de 10 segundos, dos ciclos.
30.  Apague la unidad estimuladora, retire las agujas para acupuntura del intestino y también los cabos anudados del porta especímenes del captor que sujeta al intestino y ahora coloque el hilo que sujeta a los cuernos uterinos al porta especímenes.
31.  Encienda el botón de record y observe si hay registro de motilidad uterina, aplique algunas gotas de Ringer a 40°C, normalice el registro.
32.  Registre la motilidad uterina por espacio de 1 o 2 minutos. Y como se hizo en intestino delgado obtenga el efecto del Ringer a 4° y 40°C en el mismo lapso de tiempo.
33.  Aplique 0.1 ml de oxitocina localmente por goteo con una jeringa para insulina, registre la respuesta durante 120 segundos.
34.  Retire la preparación del captor. El profesor se encargara de la eutanasia de la rata.
35.  Seleccione en las ventanas de medición (None); BPM y P-P en las dos primeras de izquierda a derecha respectivamente, cambia el cursor a “BARRA”, señala y sombrea la longitud y amplitud de cada respuesta.

Resultados

Discusión

Conclusión

Bibliografía

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