IDENTIFICA MICROORGANISMOS CON BASE EN NICAS BACTERIOLÓGICAS
Paulina SaavedraTrabajo15 de Junio de 2018
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MANUAL DE PRÁCTICAS
“IDENTIFICA MICROORGANISMOS CON BASE EN
TÉCNICAS BACTERIOLÓGICAS”
ELABORADO POR[pic 3]
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PRESENTACION En éste programa se marca la realización de prácticas que permitan el desarrollo de las disciplinas necesarias, las cuales ayuden a los alumnos a realizar la identificación de la bacteria causante de una infección. |
FUNDAMENTACIÓN Para el desarrollo de las habilidades necesarias, el docente integra varias prácticas que irán de acuerdo a la aplicación del método científico. El alumno adquirirá destrezas en el manejo de material y equipo de Laboratorio. |
OBJETIVO Al finalizar el curso, el alumno es capaz de identificar los diferentes tipos de microorganismos basándose en los resultados de la morfología, necesidades de nutrición, etc. revelados en el cultivo de las bacterias. De la misma manera sabrá, los tipos de relación del huésped con las bacterias y la acción de los antibióticos, así como la elaboración e importancia de los antibióticos. |
I N D I C E
| Pág. |
Presentación……………………………………………………………………………………..……………………………………………………..… | 2 |
Fundamentación………………………..…………………………………………………..……………………………………………………….. | 2 |
Objetivo………………………………………………………………………………………………..……………………………………………………….. | 2 |
Índice………………………………………………………………………………...……………………………………………………………………………. | 3 |
PRIMERA UNIDAD | |
Práctica 1 “Tinción de Estructuras Bacterianas………………………………..…………………..… | 4 |
Práctica 2 “Comparación de desarrollo bacteriano en diferentes medios de cultivo”………………………………………………………………………..……………………… | 7 |
Práctica 3 “Recuento de Bacterias en muestras líquidas”……………………………… | 9 |
SEGUNDA UNIDAD | |
Práctica 4 “Cultivo de Exudado Faríngeo”…...………………………………………….…………………… | 12 |
Práctica 5 “Cultivo de Secreción Nasal”……...……………………………………………………………….… | 14 |
Práctica 6 “Antibiograma para Bacterias Gram Positivas”……..………………..………. | 16 |
Práctica 7 “Urocultivo”……………………………………...………………………………….. | 18 |
TERCERA UNIDAD | |
Práctica 8 “Coprocultivo”………………………………………………………………………….……………………………….. | 21 |
Práctica 9 “Identificación de Enterobacterias”…………………………………………………………... | 24 |
Práctica 10 “Antibiograma para Bacterias Gram Negativas”…..……………………... | 27 |
Referencias…………….…………………………………………………………………………………………………………………..… | 29 |
Glosario.………………………………………………………………………………………………………………………………………………………… | 30 |
PRÁCTICA No. 1
TINCION DE ESTRUCTURAS BACTERIANAS
(TECNICA DE GRAM Y DE SHEAFFER-FULTON)
NOMBRE DEL ALUMNO__________________________________________ GRUPO_____________
FECHA DE LA REALIZACIÓN_______________________ FIRMA DEL MAESTRO_______________
1. OBJETIVO
AL FINALIZAR LA PRÁCTICA, LOS ALUMNOS DOMINARÁN LA TÉCNICA DE TINCIÓN DE ESPORAS Y LA TINCION DE GRAM, ASÍ COMO LA MANERA DE ENFOCAR LAS ESTRUCTURAS BACTERIANAS Y DIFERENCIARLAS EN EL FROTIS.
2. MATERIAL Y REACTIVOS
MATERIAL REACTIVOS
2 ASAS BACTERIOLÓGICAS REACTIVOS PARA TINCIÓN DE:
2 MECHEROS SHEAFFER - FULTON
1 HISOPO ESTERIL GRAM
1 VASO DE PRECIPITADO
14 PORTAOBJETOS AGUA DESTILADA
1 PARRILLA ELÉCTRICA
PIPETAS PARA LOS COLORANTES
1 PORTATINCIONES
2 MICROSCOPIOS COMPUESTOS CON 100X
1 BOLSA PARA RESIDUOS SÓLIDOS INFECTO-CONTAGIOSOS
MUESTRA BIOLÓGICA
HECES FECALES DE CABALLO
MUESTRA DE CULTIVO
3. PROCEDIMIENTO
TINCION DE SHAEFFER-FULTON
- COLOCAR UN POCO DE LAS HECES DE CABALLO EN EL VASO DE PRECIPITADO, AGREGAR APROXIMADAMENTE 100 mL DE AGUA DESTILADA Y COLOCARLO EN LA PARRILA ELECTRICA HASTA EBULLICIÓN.
- DEJAR QUE LA MEZCLA HIERVA POR APROXIMADAMENTE 30 min. DEJAR ENFRIAR UN POCO.
- TOMAR CON EL CIRCULO DEL ASA BACTERIOLÓGICA UN POCO DEL SOBRENADANTE DEL VASO DE PRECIPITADO Y EXTENDERLO EN EL CENTRO DE UN PORTAOBJETO. DEJAR SECAR.
- ENCENDER LOS MECHEROS Y PASAR EL FROTIS SOBRE LA LLAMA PARA FIJARLO.
- TEÑIR CON LA TINCION DE SHAEFFER-FULTON.
TINCION DE GRAM
TINCION DE GRAM
- HACER FROTIS DE CADA BACTERIA Y FIJARLOS CON CALOR.
- CUBRIR LOS FROTIS CON CRISTAL VIOLETA Y DEJARLO ACTUAR DURANTE 1 min ESCURRIR EL COLORANTE Y LAVAR CON CHORRO SUAVE DE AGUA.
- CUBRIR CON SOLUCION DE LUGOL Y DEJARLO ACTUAR DURANTE 1 min ESCURRIR EL REACTIVO Y LAVAR CON CHORRO SUAVE DE AGUA.
- COLOCAR EL FROTIS EN FORMA VERTICAL Y USANDO UN FONDO BLANCO, DECOLORAR AÑADIENDO GOTA A GOTA LA SOLUCIÓN DE ALCOHOL-ACETONA DE 5 A 15 SEGUNDOS. EL MOMENTO EXACTO PARA TERMINAR LA DECOLORACIÓN ES CUANDO DEJAN DE FLUIR “HILOS DE COLORANTE” POR EL FROTIS. ESTE ES EL PASO CRITICO DE LA TINCIÓN. LAVAR INMEDIATAMENTE CON UN CHORRO SUAVE DE AGUA.
- CUBRIR EL FROTIS CON SAFRANINA Y DEJARLA ACTUAR DURANTE 1 min ESCURRIR EL COLORANTE Y LAVAR CON UN CHORRO SUAVE DE AGUA. DEJAR SECAR AL AIRE.
- OBSERVAR LA PREPARACIÓN AL MICROSCOPIOCON OBJETIVO DE INMERSIÓN
- TECNICA DE TINCION DE GRAM POR PASOS
- HACER CUATRO FROTIS CON UNA MEZCLA DE BACTERIAS Y FIJARLOS AL CALOR.
- INICIAR LA TINCIÓN DE GRAM Y SEPARAR UN FROTIS DESPUÉS DE CADA UNO DE LOS PASOS DE LA TECNICA.
- OBSERVAR AL MICROSCOPIO CON EL OBJETIVO DE INMERSIÓN.
- INFLUENCIA DEL TIEMPO DE DECOLORACION EN LA TECNICA DE GRAM
- HACER DOS FROTIS CON UNA MEZCLA DE BACTERIAS.
- TEÑIR LOS FROTIS CON LA TINCIÓN DE GRAM DEJANDO ACTUAR LA SOLUCIÓN DE ALCOHOL-ACETONA 3 SEGUNDOS EN UNO Y 3 MINUTOS EN EL OTRO.
- TERMINAR TINCIÓN.
- OBSERVAR AL MICROSCOPIO CON EL OBJETIVO DE INMERSIÓN.
4. ESQUEMA DEL PROCEDIMIENTO
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