La presión osmótica

UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA –USAC-

CENTRO UNIVERSITARIO DEL NORTE –CUNOR-

TECNICO EN PRODUCCION PECUARIA

Curso: Botánica

Licenciada: Vilma Quezada

Informe: 1

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Estudiante: Héctor Fernando López

Carne: 201644855

INTRODUCCION

La presión osmótica en tejidos vegetales se da en los índices de ciertas propiedades de una solución, La plasmólisis y la des plasmólisis son fenómenos relacionados con la pérdida o ganancia de agua, en la célula.

Difusión del agua en la célula vegetal, se basa más en un sistema osmótico,

Y para hacer esto se necesita una substancia osmóticamente activa, separadas del disolvente por una membrana semipermeable.

El plasma lema y el tonopalsto, como capas de la célula vegetal, son membranas semipermeables, ya que libremente dejan circular el agua, pero no dejan pasar las substancias diluidas en el jugo celular

Las disoluciones en relación con la concentración del jugo celular las podemos                   clasificar en:

1. Hipertónicas, cuando su concentración osmótica es mayor que la del jugo celular.
2. Isotónicas, cuando su concentración osmótica es igual a la concentración del jugo celular.
3. Hipertónicas, cuando su concentración osmótica es menor que la concentración osmótica del jugo celular.

OBJETIVOS

• Comprender como se da la concentración en el medio, en la pérdida o ganancia de agua por la célula.
• Determinar la presión osmótica en diversas células vegetales
• Poder describir las características de la célula

PRESION OSMOTICA EN TEJIDOS VEGETALES

• MATERIAL

• Preparación de una solución 1 molar de KNO3
• Prepare una solución 1 molar de sacarosa
• Allium cepa (cebolla morada)
• Egeria densa (elodea)

• EQUIPO

• cubreobjetos
• portaobjetos
• navaja
• agitador
• papel filtro
• caja petri
•  10 tubos de ensaye
•  gradilla
• solución 1 molar de KNO3
• agua destilada

PROCEDIMIENTO

• Se prepara un corte fino de la epidermis fresca de Allium cepa (cebolla morada) y de Egeria densa (elodea) (desprenderla en capas) y se pone en el portaobjetos; se agrega una gota de agua destilada y se cubre con el cubreobjetos.

• después observamos por medio del microscopio como las células se encuentran intactas, el color rojizo se debe a la antocianina, que es un pigmento que se le agrega para poder observar su diferencia.

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• Se prepara un corte de cebolla morada se pone en el portaobjetos; se agrega una gota de la solución 1 molar de KNO3 y se cubre con el cubreobjetos.

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• . Se observa la plasmólisis y se anota cómo se manifiesta.

.

• Preparar 50 ml de una solución 1 molar de sacarosa y a partir de esta solución preparar u10 ml de cada una de las siguientes soluciones en tubos de ensaye:
•  0.14
•  0.18
•  0.20,
•  0.22,
•  0.24,
•  0.28,
•  0.30,
•  0.34,
•  0.38
•  0.40 M.

• Dejar una capa fina en cada tubo de ensayo, de cebolla por un intervalo de dos a tres.

• Después de 30 minutos observar las capas de la cebolla sin dejar de mantenerla húmedas con la solución las preparaciones, y buscando el número de células plasmolizadas y no plasmolizadas.

CONCLUSION

Se basa en la presión que se debe aplicar a una solución para detener el flujo neto de disolvente a través de una membrana semipermeable,  

Las reacciones metabólicas de las que depende la vida funcionan dentro de un ambiente líquido y requieren para su funcionamiento que las concentraciones relativas de agua y de solutos se mantengan dentro de límites bastante estrechos

 depende, en gran medida, del movimiento controlado de solutos entre los líquidos internos y el ambiente externo. El proceso también regula el movimiento de agua que sigue a los solutos por ósmosis.

UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA –USAC-

CENTRO UNIVERSITARIO DEL NORTE –CUNOR-

TECNICO EN PRODUCCION PECUARIA

Curso: Botánica

Licenciada: Vilma Quezada

Informe: 2

[pic 4]

Estudiante: Héctor Fernando López

Carne: 201644855

INTRODUCCION

El tejido meristemáticos, es la región donde ocurre la mitosis, Meristemos pueden estar presentes en los extremos de raíces y tallos, el tejido tiene varios subtítulos, como     El tejido fundamental, El tejido epidérmico, El tejido vascular

Parénquima: Es un tejido simple de poca especialización, formado por células vivas en la                   madurez, que conservan su capacidad de dividirse.

Xilema: Tejido vegetal formado por células muertas, rígidas y lignificadas que conducen la savia y sostienen la planta.

Floema: Tejido vegetal constituido por los vasos o conductos que transportan la savia elaborada.

Epidermis

Membrana epitelial que recubre la parte más superficial del cuerpo de los animales.

Tallo: Órgano de la planta, desprovisto de hojas y generalmente introducido en la tierra, que crece en sentido contrario al tallo y le sirve de sostén y para absorber de la tierra las sustancias minerales y el agua necesarias para el crecimiento de la planta y para su desarrollo.

OBJETIVOS

Lograr diferenciar los tejidos simples y meristemos

Conocer las clases de tejidos

Entender y diferenciar las diferentes estructuras de cada uno de los tejidos, de cada clase de planta ya sea de tallo, de nudo, de raíz así como de otros.

Tejido simple y meristemáticos

Tejidos complejos: xilema, floema y epidermis

                                 Raíz

                                 Tallo

MATERIALES Y EQUIPO:

•  Microscopio
• Porta y cubre objetos
• Cajas de petri
• 2 agujas de disección
• Gotero
• Hoja de hule (Ficus elástico)
• Safranina
• Raíz de hierba de pollo (Tradeschantia)
• Hoja de afeitar nueva
• Azul de toluidina
• Agua destilada
• Duroport o cartón piedra
• Pecíolo de begonia
• Hoja de narciso (Nerium oleander)
• Tallo de apio (Apium gravelens)
• Compuestas o vivorana (Asclepios curassavica)
• Hoja de maguey (Agave sp)
• Semillas de frijol (Phaseolus vulgaris)
• Fluoroglucina
• Planta acuatica (peciolo)
• Pecíolo de ayote (Cucubita pepo), remolacha, begonia
• Pecíolo de hiquerillo (Ricinos comunis)
• Tallo de Ramie (Bohemia nivea)
• Fruto de pera (Pyrus comunis)
• Tallo de grama (Paspalum notatum)
• Tallo de pino (Pinus maximinoii)
• Vidrios de reloj
• Azul de metileno
• Gramínea
• Hoja de repollo o coliflor fresco
• Hola de siempre viva
• Dicotiledónea herbácea
• Plantas pequeñas de ciprés
• Hoja y tallo de azalea
• Hojas de clavel

Procedimiento:

MERISTEMOS:

• Realizar cortes transversales del nudo de una gramínea para observar el meristemo intercalares Hacer cortes longitudinales de la parte final de las raíces de gramínea, y observamos meristeco subapicales.

• Hacer cortes transversales de una rama de planta leñosa, y observamos cambium vascular.

PARENQUIMA

• Realizar un corte transversal a la planta acuática y observar el Aerénquima.

• Realizar un corte transversal para observar el tejido típico del parénquima en la región de la medula, contiene el cual le llamaremos colénquima.

• Realizar un corte transversal a la raíz de la hierba de pollo, observar el parénquima de reserva

• Realizar un corte transversal en la hoja de hule y observar el parénquima de empalizada.

COLENQUIMA

• Con el corte transversal a la vena principal de hoja de narciso, observar la colénquima angular.

• Realizar un corte transversal del tallo de apio, observar el colénquima laminar

• Realizar un corte transversal de pecíolo de hiquerillo y observar el colénquima laminar.

ESCLEREIDAS

• Las macroesclereidas observar con los cortes transversales en la testa de fríjol
• Las astroesclereidas observar en cortes transversales de la hoja de hule

CONCLUSION

Es preciso, que la persona obtenga los materiales necesarios para poder observar, de las raíces, tallos y hojas lo necesario, ya que asiendo practica para cada corte por ejemplo los cortes transversales, en las gramíneas, para observar el meristemáticos intercalares.

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