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Componentes no Protoplasmáticos secundarios e Inclusiones celulares


Enviado por   •  27 de Enero de 2022  •  Informes  •  1.701 Palabras (7 Páginas)  •  1.666 Visitas

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Facultad de Farmacia y Bioquímica

FARMACOBOTÁNICA

Práctica N° 3

Título        : Componentes no Protoplasmáticos secundarios e

Inclusiones celulares

Integrantes : Ayra Ascanoa, Edilfonsa

Caurino Ramírez, Rosmel Ccahuin Ñacayauri, Karina Portillo Sucapuca, Juan Serna Mamani, Tabita

Ciclo        : II

Sección        : FB2N1

Grupo        : D

Docente        : Mg. Domingo Iparraguirre León

  1. Introducción

Los compuestos heterogéneos del fenol se encuentran en formas granulares y con corpúsculos de volúmenes y coloraciones diferentes. En el caso de las antocianinas, se interrelacionan en el contacto de las plantas con el ambiente, por lo que, no se encuentra necesariamente en la planta. Estos se originan en las vesículas que se logran separar del retículo endoplasmático y así formarse a sus causas como espaciado al citoplasma y sus productos coloidales. También encontramos las sustancias ergástricas, en las cuales se almacenan grasas, proteínas, taninos y cristales, donde las sales de calcio son en esencia oxalatos bajo formas aciculares, prismáticas y taninos.

Inclusiones no protoplasmáticas, están constituidos por el conjunto de compuestos inertes que son producto de la actividad metabólica dentro de la célula; sin embargo, pueden ser incorporados dentro de los componentes protoplasmáticos por medio de reacciones metabólicas. Las inclusiones celulares, generalmente suelen encontrarse en vacuolas, en el citoplasma y paredes celulares.

En la práctica se lleva a cabo a identificación de oxalato de calcio en diferentes formas como drusas, maclas y cistolitos. Para ello las plantas usadas fueron: La tuna(tallo), oreja de gato (hoja), Tara y Boliche (frutos).

  1. Competencias

Reconoce los componentes no protoplasmáticos secundarios: antocianinas, saponinas y taninos.

Reconoce las inclusiones de oxalatos de calcio formados en la célula.

  1. Procedimientos y resultados

  1. Tallo de la tuna

Como primer paso se realiza el tipo de corte transversal del tallo modificado de tuna cuyo nombre científico es opuntia ficus-indica. Como segundo paso se coloca la muestra en la lámina portaobjeto con una gota de agua y se cubre la lámina para ser llevada al microscopio, donde se utilizará el aumento 400X para ser observada.

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RESULTADO

Como resultado se puede observar células isiodiamétricas, conteniendo un agregado cristalino de aspecto asteroideo: la drusa

  1. Hoja de oreja de gato  (Tradescantia zebrina)

Reconocimiento de Antocianinas: Se procederá hacer un corte superficial del envés de la hoja, previamente separamos 3 láminas portaobjetos y en cada una de ellas agregaremos 1 gota de agua, 1 gota de HCl 0.5N y una gota de NaOH 0.5N.

Una vez obtenida los cortes (tener en cuenta que deben tener el color morado) las añadiremos a cada lámina, luego procederemos para el análisis microscópico.

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RESULTADOS[pic 12][pic 13][pic 14][pic 15][pic 16][pic 17][pic 18]

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  1. Fruto de la Tara

Reconocimiento de Taninos, colocar en un tubo de ensayo, 1 ml de agua o alcohol al 70 %, 80 %, agregar trozos de frutos de tara. Homogenizar y dejar reposar por 5 a 10 minutos (a mayor tiempo, mejora el resultado).Trasvasar la parte líquida a otro tubo de ensayo. Agregar una gota del reactivo que es el cloruro férrico

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RESULTADO

Al agregar el cloruro férrico se torna negro.

  1. Fruto de Boliche (Sapindus saponaria)

Reconocimiento de Saponinas y Taninos: Colocar en tubos de ensayos distintos, muestras de 1,0 mL. de macerados alcohólicos o acuosos de frutos de “tara” y "boliche" y proceder al reconocimiento de saponinas (prueba de la espuma) y taninos (cloruro férrico) respectivamente.

  • En un tubo de ensayo con agua agregamos trozos del fruto de boliche y dejamos transcurrir de 5 a 10 minutos.
  • Una vez transcurrido estos 10 minutos trasvasamos a otro tubo solo el líquido, y notaremos cierta coloración del agua que inicialmente era transparente.
  • Como paso final agitamos la solución por un tiempo de 30 segundos y dejamos reposar por 30 minutos, y observamos los resultados para determinar si es positivo o no a saponinas.

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Resultados:

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1.- Tubo de ensayo N°1: después de agitar la solución y esperar 30 minutos se puede observar que la espuma desaparece y esto nos indica que es negativo a presencia de saponina.

2.- Tubo de ensayo N°2: se puede apreciar que transcurrido los 30 minutos después de agitar la solución la espuma prácticamente desapareció por completo indicativo de que es negativo a la presencia de saponina.

3.- Tubo de ensayo N°3: podemos apreciar que la presencia de la espuma persiste aun transcurrido el tiempo de 30 minutos, dando como resultado la positividad a la presencia de saponina.

4.- Tubo de ensayo N°4: se aprecia que la espuma desapareció por completo una vez transcurrido los 30 minutos, el cual indica que es negativo a la presencia de saponina.

5.-Tubo de ensayo N°5: se observa rastros de espuma una vez transcurrido los 30 minutos, pero desapareció más del 50%, para que podamos concluir de que es positivo a la presencia de saponina nos debería haber quedado por los menos el 50% de espuma y evidentemente es menor, por lo tanto es negativo.

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