Manual de parasitologia. LABORATORIO DE PARASITOLOGIA

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LABORATORIO DE PARASITOLOGIA

INTRODUCCIÓN

        Debido a que el tamaño relativamente grande de muchos de los animales parásitos más comunes los hace visibles a simple vista, el hombre antiguo conocía  sin duda algo de su estructura y de las enfermedades que podían causar. Los parásitos tales como Ascaris, Enterobius y Taenias fueron conocidas desde antes de Cristo en Egipto, Grecia y Roma.

        La parasitología comenzó a desarrollarse como ciencia a mediados del siglo XIX; sin embargo, ya con anterioridad, a mediados del siglo XVII, Redi, que fue llamado el padre de  la parasitología, escribió el primer texto ilustrado sobre la materia. A finales del siglo XVIII, Gotz escribió el más amplio texto sobre parásitos del hombre publicado hasta ese momento.     

        En la década de 1860 se establecieron claramente los ciclos vitales de muchos parásitos; habiendo los parasitólogos de la época rastreado varios parásitos a través de sus fases de adulto, huevo y larva para llegar nuevamente a adulto. De esta manera dejaron a un lado la teoría de la generación espontánea.

           Los conocimientos básicos sobre parasitología no han avanzado significativamente en el siglo XX. Los ciclos vitales de virtualmente todas las enfermedades parasitarias han sido bien establecidas y en la mayoría de los países desarrollados se han  implantado medidas  preventivas. Esto no deniega el hecho de que las enfermedades parasitarias dan cuenta todavía de inestimables pérdidas de vidas, morbilidad ampliamente diseminada y en muchos países retrasan el desarrollo económico. Debido a los crecientes viajes y la mayor movilidad de individuos en todo el mundo, es necesario que el personal de cualquier laboratorio adquiera pericia en el conocimiento de los diversos parásitos que puedan hallarse en los materiales clínicos.

           El diagnostico de las enfermedades parasitarias se apoya en  gran parte en los exámenes macro y microscópicas  de heces, orina, sangre, esputo y tejidos. La implementación y el conocimiento         de técnicas confiables constituyen un paso muy

importante para este proceso.

PRÁCTICA 1

RECOLECCIÓN, MANEJO Y CONSERVACIÓN DE LA MATERIA FECAL PARA EL DIAGNOSTICO DE LAS PARASITOSISINTESTINALES

        Las muestras fecales se examinan para detectar la presencia de protozoarios y helmintos. Los protozoarios suelen encontrarse en la fase de trofozoito y de quiste; mientras que los helmintos aparecen en forma de huevos y de larvas, aunque a veces también pueden observarse gusanos adultos enteros o en segmentos. Mientras los huevos, los trofozoitos y los quistes solo pueden verse al microscopio, la mayoría de los helmintos larvas y adultos pueden verse a simple vista macroscópicamente.

        Las muestras útiles para la búsqueda de parásitos intestinales incluyen:

1. Raspado perianal
2. Materia fecal obtenida por defecación (heces fecales) o por endoscopia de colon
3. Contenido duodenal obtenido por endoscopia o por cápsula  de Beat

            La materia fecal, aunque se trata de una muestra cuyo manejo resulta en ocasiones repulsivo, es la más fácil de obtener y por lo mismo, la que más frecuentemente se usa.

        Dado que los medicamentos que contienen aceite mineral, bismuto, antibiótico, antimaláricos u otras substancias químicas que pueden comprometer la detección de protozoarias intestinales, el examen de las muestras debe realizarse después de una semana al menos de interrumpir la terapia. Así mismo, los pacientes que han recibido un enema de bario.

RECOLECCIÓN

        La recolección de las heces debe realizarse evitando la contaminación con otros productos; como la tierra, agua del retrete (taza de baño) u orina; para tal fin, se debe orientar  al paciente o a la persona que esté al cuidado del mismo. La muestra de excremento (o matera fecal) debe depositarse en un recipiente pequeño de 100 mL. Aproximadamente de vidrio o plástico duro que tenga tapa hermética y de boca ancha; la cantidad que debe depositarse es de 1 gramo o el equivalente al tamaño de una nuez o un hueso de durazno. Las muestras deberán etiquetarse con los datos del paciente: nombre, edad, sexo y fecha.

        Si el tamaño de la muestra no es la adecuada preferible solicitar otra al paciente.

        Se debe indicar al paciente que defeque directamente en el recipiente o que lo haga en un trozo de papel kraft (aluminio) o Manila y que utilice uno a dos abatelenguas para introducir la muestra en el recipiente.

        En caso de lactantes la muestra no debe recogerse del pañal, se recomienda tomarla con cucharita rectal y se deposita en suero fisiológico para su análisis inmediato.

        Las muestras deben llevarse al laboratorio tan pronto como sea posible (por ejemplo media hora) después de la defecación, debido a que al poco tiempo de ser  excretados los quistes y trofozoitos comienzan a alterarse o a desintegrarse y se vuelven irreconocibles.

        Los frascos con la muestra de materia fecal se conservarán durante el trayecto en un ambiente fresco pues con el calor se acelera la fermentación orgánica. No debe permitirse la exposición al sol ni la refrigeración.

CONSERVACIÓN

        Si no es posible el envió rápido de las muestras al laboratorio, deberán tratarse con conservadores  químicos, los cuales mantienen las muestras durante un tiempo mayor sin correr el riesgo de que las formas parasitarias se deformen o se destruyan. Algunas de las más usadas son los siguientes:

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