Reducción de bacterias intracanales durante la preparación del conducto radicular con y sin agrandamiento apical. Endodoncia Internacional

Reducción de bacterias intracanales durante la preparación del conducto radicular con y sin agrandamiento apical. Endodoncia Internacional

Journal, 35, 437–446, 2002.

Objetivo Comparar la reducción bacteriana intracanal in vitro utilizando instrumentos rotativos de níquel-titanio con y sin agrandamiento apical.

Metodología Treinta y ocho raíces palatinas del maxilar

Los dientes molares, con ápices maduros, se subdividieron de acuerdo con las longitudes y luego se asignaron aleatoriamente a dos grupos experimentales y uno de control. Las raíces fueron esterilizadas y luego reinfectado con Enterococcus faecalis, que sirvió como marcador bacteriológico. Todas las raíces en los grupos experimentales se prepararon en una secuencia descendente con limas rotativas GT accionadas por motor a 350 rpm. En el grupo experimental A (n = 16) agrandamiento apical adicional a ISO tamaño 35 se realizó. En el grupo B (n = 16) una serie la técnica de retroceso se siguió sin apical ampliación. Esto se combinó en los grupos A y B con riego con NaOCl y EDTA. En el grupo de control (grupo C, n = 6) solo se realizó riego, sin preparación mecánica Luego se tomaron muestras de los conductos radiculares para determinar el número de remanentes bacterias

Resultados En los grupos A y B, 15 (94%) y 13 (81%)

Las muestras se hicieron libres de bacterias, respectivamente. En el grupo de control C, ninguna de las muestras estaba libre de bacterias. Hubo una diferencia significativa en Los efectos antibacterianos de experimentación y control regímenes Sin embargo, no hubo diferencia significativa entre los métodos de preparación utilizados en los grupos experimentales Conclusiones No hubo diferencias significativas enreducción bacteriana intracanal cuando Ni – Ti GT rotativo

Se utilizó preparación con riego NaOCl y EDTA con o sin técnica de preparación de agrandamiento apical. Por lo tanto, puede no ser necesario eliminar la dentina en la parte apical del conducto radicular cuando El estrechamiento coronal se logra para permitir un riego satisfactorio del sistema del conducto radicular con agentes antimicrobianos.

Introducción

El papel de las bacterias y sus productos en la iniciación, se ha establecido la propagación y persistencia de periodontitis perirradicular. Estos microorganismos obtienen su suministro nutricional de vital, tejido pulpar degenerativo y necrótico, saliva del boca, proteína sérica de los tejidos perirradiculares y metabolitos de otras bacterias. El número de microorganismos dentro de un sistema de conducto radicular infectado puede variar de 102 a más de 108.

Los microbios están presentes en todas las partes de la raíz. Sistema de canales, incluyendo aletas y anastomosis y puede se puede encontrar a diferentes profundidades de hasta 300 µm dentro los túbulos dentinarios, desde el extremo pulpar. También parece haber una variación regional en la medida en que se invade la dentina; túbulos cervicales están invadidos en mayor medida que los túbulos de raíz media, que, a su vez, invadieron más que los de la apical región.

Cualquier método utilizado para desinfectar el conducto radicular debe ser capaz de acceder y eliminar los microbios tanto como sea posible de todas las partes del sistema.

Los objetivos del tratamiento del conducto radicular son desinfectar sistema de conducto radicular a fondo, obturar completamente el espacio creado para sepultar cualquier microbio que tenga eliminación escapada y para evitar la reinfección; sin causando cualquier daño iatrogénico (Saunders y Saunders 1997, Sundqvist y Figdor 1998). Un quimiomecánico Se recomienda la técnica de preparación para desinfectar la raíz canales (Bystrom et al. 1985) porque permite una mayor cantidad de conductos radiculares que se liberarán de bacterias; entre 20% (sin el uso de un antimicrobiano irrigante) hasta alrededor del 80% (con el uso de un irrigante antimicrobiano) de los canales pueden desinfectarse (Bystrom & Sundqvist 1981, Bystrom y Sundqvist 1983).

La última generación de instrumentos para conducto radicular. Incluyen instrumentos de níquel-titanio (Ni-Ti) accionados por motor. Se ha encontrado que estos producen buena conformación (Glossen et al. 1995) en virtud de su mayor flexibilidad (Walia et al. 1988). Esta superelasticidad junto con el desarrollo de cuchillas de corte especialmente configuradas significa que estos instrumentos accionados por motor pueden ser usado de manera eficiente y segura incluso en raíces estrechas y curvas canales (Short et al. 1997).

Los investigadores han evaluado la eficacia de diferentes técnicas de preparación en la limpieza de la región apical del conducto radicular (Wu y Wesselink 1995, Siqueira et al. 1997). Wu y Wesselink (1995) compararon la eficiencia de tres técnicas, sin presión, sin corona, sin presión y las técnicas de equilibrio forzado utilizando archivos K, en Limpieza de la porción apical de los conductos radiculares curvos. Los restos de superficie restante se usaron como evaluación criterios y concluyeron que la porción apical de la el canal se limpió menos que el medio y el coronal porciones, independientemente de la técnica utilizada. La técnica de fuerza equilibrada produjo una porción apical más limpia del canal en comparación con las otras dos técnicas.

Siqueira y col. (1997) compararon la efectividad de cinco técnicas de instrumentación para limpiar el tercio apical de conductos radiculares utilizando un método de evaluación histológica.

Los canales se prepararon con la técnica de retroceso utilizando limas de acero inoxidable o Ni-Ti, una técnica ultrasónica utilizando un archivo ultrasónico de tamaño ISO 15, utilizando fuerza equilibrada Flex-R-files e instrumentos Canal Master U. Llegaron a la conclusión de que ninguna de las cinco técnicas de instrumentación probado fueron efectivos para desbridar completamente la raíz sistema de canal. Agrandamiento apical durante la limpieza del canal y los procedimientos de modelado tienen el potencial de eliminar más bacterias del sistema de conducto radicular (Parris et al. 1994, Yared y Bou Dagher 1994, Siqueira et al. 1999).  Sin embargo, todavía queda cierta controversia en cuanto a si es necesaria la ampliación apical. Buchanan (1993a, b, 1996, 1998) ha abogado por un mínimo de apical preparación debido a que minimiza el potencial para la creación de cremalleras apicales y proporciona mejor control de materiales de relleno.

El objetivo de este estudio fue comparar el intracanal reducción bacteriana durante la preparación del conducto radicular usando Limas rotativas Ni – Ti GT y un irrigante antimicrobiano con y sin ampliación apical para probar la hipótesis nula de que no había diferencia entre los dos técnicas.

Materiales y métodos

El método utilizado se basó en publicaciones anteriores protocolos (Orstavik y Haapasalo 1990, Dalton et al. 1998,Siqueira y col. 1999). Cuarenta y cinco extractos permanentes el primer y segundo molar maxilar humano eran obtenido para que sus raíces palatinas puedan ser utilizadas en el estudiar. Estos dientes se almacenaron en solución salina normal con unos pocos cristales de timol. Para ser incluido en el estudio, en la raíz palatina tenía que cumplir los siguientes criterios:

1 Largo, mínimamente curvado, estrecho y sin caries.

2 ápice de la raíz madura sin evidencia de raíz externaresorción

3 Suficientemente separado de las raíces bucales para permitir Fácil resección de la raíz palatina. Un disco de diamante de baja velocidad bajo riego salino se usó para separar la raíz palatina de cada diente. Se usó una brocha de púas (tamaño ISO 20) para eliminar cualquier restos de pulpa del conducto radicular asegurando que en la pared del canal no estaba equipada. La permeabilidad de cada El canal se estableció insertando suavemente un archivo KFlexofile ISO tamaño 10 (Dentsply Maillefer, Ballaigues, Suiza) hasta la punta emergió del agujero apical. Esta longitud se observó y la longitud de trabajo (WL) de cada raíz la muestra se calculó restando 1 mm. Después de WL determinación, el apical de 3 mm, incluido el agujero, de cada muestra se cubrió con Dyract AP (DeTrey, Dentsply, Reino Unido) para evitar cualquier extrusión o fuga de material durante la preparación del conducto radicular y la muestra colección.

Esterilización de muestras

Se agregaron alícuotas de 5 ml de solución estéril de caldo tríptico de soja (TSB) (Bioconnections, Leeds, Reino Unido) a cada recipiente universal con la muestra. Agitación durante aproximadamente 30 s en un mezclador vortex (McQuilkin, Glasgow, Reino Unido) fue realizado para ayudar a la penetración de TSB en la raíz canal del espécimen. Los 45 contenedores universales con las muestras se colocaron en una bandeja de aluminio y esterilizado en autoclave a 121 ° C durante 15 min.

Mantenimiento de Enterococcus faecalis viable, preparación de caldo infectante, prueba de viabilidad de TSB infecciosa e infección de muestras Un vial de Enterococcus faecalis NCTC 29212 congelado fue La fuente de bacterias y una muestra en un asa de alambre estéril se usó para inocular una placa de agar sangre. El plato era incubado aeróbicamente a 37 ° C durante la noche. Un crecimiento viable de E. faecalis se mantuvo subcultivando dos colonias de la placa anterior al agar sangre, cada otro día. Cada 3–4 días, cuatro botellas que contienen Se inocularon 100 ml de TSB estéril con dos colonias de E. faecalis y después de una incubación durante la noche, 0,5 ml. alícuotas de estos se usaron para infectar y mantener infección de las muestras durante la duración del experimento. Alrededor de las 10 a.m. de los días posteriores a la TSB inoculación (es decir, todos los martes y viernes para el duración del experimento), el contenido líquido de cada el recipiente de la muestra se decantó y se reemplazó con 5 ml de TSB infectado. Estos fueron sometidos a vórtice durante 30–40 s para mejorar la penetración de la TSB infectada en la raíz canal de cada muestra. La pureza de E. faecalis que cada muestra a la que se expuso se verificó en uno de forma regular mediante el enchapado de muestras tomadas al azar de Varios contenedores universales. Inicialmente, un período de infección de 2 semanas fue designado para infectar las muestras, basado en el estudio de Orstavik y Haapasalo (1990). Después de estas 2 semanas iniciales, el TSB infectado fue reemplazado para las muestras restantes a la misma frecuencia para el duración total del experimento.

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