TITULO DEL PROYECTO: “CRECIMIENTO MICROBIANO”
LizbethValerianoInforme30 de Junio de 2019
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UNIVERSIDAD NACIONAL SAN AGUSTÍN DE AREQUIPA
FACULTAD DE INGENIERIA DE PROCESOS
ESCUELA PROFESIONAL DE INGENIERIA QUÍMICA
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TITULO DEL PROYECTO:
“CRECIMIENTO MICROBIANO”
AUTORES:
- Choque Ormachea, Williams Alexander
- De la Cruz Arosquipa, Ruth Maribel
- Gallegos Pinto, Nikol Dalet
- Guevara Gutiérrez, Johani Belu
- Lazarte Chillpahuanca, Claudia
- Machacca Condori, Venus Estefany
- Mamani Condori, Katerine Pilar
- Mamani Onsihuay, Arlen Scoly
- Maqquera Cahuana, Kevin Carlos
- Mayta Sánchez, Sharon Alexandra
- Olazabal Ticona, Winnie Karolina
- Paricahua Cárdenas, Romina Izamar
- Quispe Escalante, Rosmery Diana
- Valeriano Monrroy, Lizbeth Gaby
DOCENTE:
Mg. José Javier, Mamani Quispe
CURSO:
Matemática Aplicada a la Ingeniería de Procesos
Arequipa – Perú
2018
INDICE
RESUMEN: 3
INTRODUCCIÓN 4
MODELO EXPERIMENTAL 4
a) Materiales 4
b) Equipos 4
c) Insumos 4
PROCEDIMIENTO EXPERIMENTAL 5
RESULTADOS Y DISCUSIÓN 7
CONCLUSIONES 7
RECOMENDACIONES 8
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 8
CRECIEMIENTO MICROBIANO
Choque W.; De la Cruz Ruth.; Gallegos N.; Guevara J.; Lazarte C.; Machacca V.; Mamani K.; Mamani A.; Maqquera K.; Mayta S.; Olazabal W.; Paricahua I.; Quíspe R.; Valeriano L.
Universidad Nacional de San Agustín, Cercado, Arequipa, Perú
RESUMEN:
La presente investigación se llevó a cabo con la finalidad de determinar el crecimiento microbiano del jugo de uva a partir de un medio de cultivo, en este caso la levadura; este cultivo se realizó de manera líquida. Con esta experimentación se busca hacer uso de los modelos matemáticos, técnicas y métodos aprendidos en el curso de Matemática Aplicada en el presente mes.
El trabajo se realizó en los laboratorios de la Escuela Profesional de Ingeniería Química, haciendo uso de los principales equipos necesarios para esta investigación, como son: un espectrofotómetro y una incubadora a baño maría.
El trabajo consistió en el licuado de la uva para obtener el jugo de la misma, trabajamos en diversos tubos de ensayos colocando concentraciones diferentes de jugo junto con agua y la levadura quien es la encargada de todo el proceso de crecimiento microbiano. Luego se procedió a la medición de la absorbancia y transmitancia en un espectrofotómetro, para luego llevar nuestras diferentes concentraciones a un baño maría a temperatura constante y así proceder a la medición del crecimiento a diferentes horas.
Con todo este trabajo buscamos aplicar lo aprendido en el semestre en nuestra carrera como Ingenieros Químicos.
PALABRAS CLAVE:
Matemática, Absorbancia, transmitancia, crecimiento microbiano, espectrofotómetro, cultivo.
Abstract:
The present investigation was carried out with the purpose of determining the microbial growth of the grape juice from a culture medium, in this case the yeast; this culture was performed in a liquid way. With this experimentation we seek to make use of the mathematical models, techniques and methods learned in the course of Applied Mathematics in the present month.
The work was carried out in the laboratories of the Professional School of Chemical Engineering, making use of the main equipment necessary for this research, such as: a spectrophotometer and an incubator in a water bath.
The work consisted in the liquefying of the grapes to obtain the juice of the same, we worked in different test tubes placing different concentrations of juice together with water and the yeast who is in charge of the whole process of microbial growth. Then we proceeded to the measurement of the absorbance and transmittance in a spectrophotometer, to then bring our different concentrations to a water bath at constant temperature and proceed to the measurement of growth at different times.
With all this work we seek to apply what we learned in the semester in our career as Chemical Engineers.
Key Word:
Mathematics, Absorbance, transmittance, microbial growth, spectrophotometer, culture.
INTRODUCCIÓN
Las células microbianas son capaces de duplicarse a sí misma, en un medio apropiado física y nutricionalmente, un cultivo se reproduce continuamente, los nutrientes absorbidos y metabolizados permiten crecer al microorganismo.
En microbiología una de las principales herramientas es identificar y cuantificar microorganismos sin embargo la inexactitud para contarlas complica el trabajo además de la relación de esta con los procesos fisiológicos y el crecimiento o la supervivencia, pero podemos dar relaciones o solucionar este problema con el uso de modelos matemáticos.
Whiting (1995) distingue tres niveles entre los modelos de microbiología predictiva: los modelos de nivel primario describen los cambios en el número de microorganismos en el tiempo; los de nivel secundario brindan datos acerca del efecto de las condiciones ambientales y los modelos de nivel terciario combinan los dos primeros.
Para el estudio del crecimiento y desarrollo del hongo “Saccharomyces cerevisiae” se empleará el uso del espectrofotómetro, teniendo en cuenta la existencia de fenómenos ópticos y las propiedades que presenta la luz, al atravesar una muestra el haz luminoso, ocurre la absorción, o la dispersión que junto a las propiedades ondulatorias ofrecen bastante información.
El conteo del crecimiento del hongo se medirá la masa celular indirectamente por turbidimetría que consiste en la reducción de la transmisión de luz debido a partículas de una suspensión y cuantifica la luz residual transmitida, teniendo en cuenta que la absorbancia es directamente proporcional al peso seco.
La turbidez se define por la Organización Internacional de Normalización, como la reducción de la transparencia de un líquido causada por la presencia de partículas no disueltas de material distinto al propio líquido. Al ser un indicador de apariencia óptica, ocasionado por la dispersión y absorción de la energía lumínica a través del líquido, la turbidez solo puede ser medida usando técnicas ópticas.
MODELO EXPERIMENTAL
Materiales
- 8 tubos de ensayo
- 1 gradilla
- 2 pipetas de 5ml.
- 2 embudos
- 1 papel filtro
- 4 vasos de p.p. de 250 ml
- 2 varillas de vidrio
- 1 Colador
Equipos
- 1 balanza analítica
- 1 espectrofotómetro
- 1 incubadora a baño maría
- 1 licuadora
Insumos
- Jugo de 1kg. de uva
- Levadura seca
- Agua destilada
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PROCEDIMIENTO EXPERIMENTAL
- Primero se procedió al lavado y licuado de la uva.
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- Pasamos el jugo de uva licuado por un colador para deshacernos de las impurezas y partículas de mayor tamaño
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- Filtramos todo el contenido, con ayuda de embudos los cuales tienen papel filtro.
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- Todo lo filtrado lo almacenamos en un vaso de p.p.
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- Por otro lado, procedemos al pesado de la levadura, en este caso se realizó el pesado 8 veces, para 8 tipos de concentraciones diferentes.
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- En otro vaso de p.p. colocamos agua destilada suficiente como para toda la experimentación.
- Procedemos a preparar nuestras soluciones en los tubos de ensayo.
- Colocamos en el tubo de ensayo 1, 15 ml. de jugo de uva y 0.01g. de levadura. Este será nuestro tubo con la mayor concentración.
- En el tubo 2 colocamos, 12.5 ml de jugo de uva y 2.5 ml de agua destilada; junto con los 0.01g. de levadura.
- En el tubo 3 colocamos, 10ml de jugo de uva y 5 ml de agua destilada, junto con 0.01g. de levadura.
- En el tubo 4 colocamos, 7.5 ml de jugo de uva y 7.5 ml de agua destilada, junto con 0.01g. de levadura
- En el tubo 5 colocamos, 5.5 ml de jugo de uva y 9.5 ml de agua destilada, junto con 0.01g. de levadura
- En el tubo 6 colocamos, 4.5 ml de jugo de uva y 10.5 ml de agua destilada, junto con 0.01g. de levadura.
- En el tubo 3.5 colocamos, 5ml de jugo de uva y 11.5 ml de agua destilada, junto con 0.01g. de levadura
- En el tubo 8 colocamos, 2 ml de jugo de uva y 13 ml de agua destilada, junto con 0.01g. de levadura.
- Una vez preparadas las soluciones procedemos a homogenizar las mismas.
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- Después procedemos a realizar nuestra primera medida en el espectrofotómetro, en este obtendremos la medida de la absorbancia y de la transmitancia.
- Para ello colocamos en el recipiente de vidrio especial una cantidad de 10 ml. cuidando de ni dejar nuestras huellas, luego medimos lo parámetros que buscamos. [pic 15]
- Hacemos el mismo procedimiento con todos los tubos de ensayo.
- Luego de 1 hora procedemos a realizar otra nueva medida, observando que nuestros resultados van en aumento dándonos con ellos un crecimiento.
- Repetimos el paso anterior por un lapso de tiempo máximo de 24 horas, considerando el intervalo de tiempo de acuerdo a su preferencia.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
TUBO 1 | ABS | TRANS |
4:40 p.m. | 3.426 | 0 |
18:30 p.m. | 3.308 | 0 |
7:30 p. m. | Excedió | Excedió |
9:40 a. m. | Excedió | Excedió |
2.10 p.m. | Excedió | Excedió |
TUBO 2 | ABS | TRANS |
4:40 p.m. | 2.874 | 0.1 |
18:30 p.m. | 2.562 | 0.3 |
7:30 p. m. | 3.041 | 0.1 |
9:40 a. m. | Excedió | Excedió |
2.10 p.m. | Excedió | Excedió |
TUBO 3 | ABS | TRANS |
4:40 p.m. | 2.688 | 0.2 |
18:30 p.m. | 2.302 | 0.5 |
7:30 p. m. | 2.794 | 0.2 |
9:40 a. m. | 3.383 | 0 |
2.10 p.m. | Excedió | Excedió |
TUBO 4 | ABS | TRANS |
4:40 p.m. | 2.484 | 0.3 |
18:30 p.m. | 2.085 | 0.8 |
7:30 p. m. | 2.613 | 0.2 |
9:40 a. m. | 3.164 | 0.1 |
2.10 p.m. | Excedió | Excedió |
TUBO 5 | ABS | TRANS |
4:40 p.m. | 2.248 | 0.5 |
18:30 p.m. | 1.808 | 1.6 |
7:30 p. m. | 2.525 | 0.3 |
9:40 a. m. | 3.093 | 0.1 |
2.10 p.m. | 3.188 | 0 |
TUBO 6 | ABS | TRANS |
4:40 p.m. | 2.023 | 0.9 |
18:30 p.m. | 1.84 | 1.4 |
7:30 p. m. | 2.335 | 0.6 |
9:40 a. m. | 2.754 | 0.2 |
2.10 p.m. | 2930 | 0.1 |
TUBO 7 | ABS | TRANS |
4:40 p.m. | 2.163 | 1.7 |
18:30 p.m. | 1.83 | 1.6 |
7:30 p. m. | 2.872 | 0.4 |
9:40 a. m. | 3.074 | 0.2 |
2.10 p.m. | 2930 | 0.1 |
TUBO 8 | ABS | TRANS |
4:40 p.m. | 1.416 | 3.8 |
18:30 p.m. | 1351 | 4.5 |
7:30 p. m. | 1.806 | 1.6 |
9:40 a. m. | 2.259 | 0.6 |
2.10 p.m. | 2.363 | 0.4 |
COLOCAN MAS INFO EN RESULTADO Y PONEN LA DISCUSIÓN
CONCLUSIONES
- AQUÍ COLOCAN LAS CONCLUSIONES
RECOMENDACIONES
- El filtrado del jugo de uva debe ser hacerse con sumo cuidado para evitar la presencia de partículas que puedan alterar el resultado
- Se debe trabajar con sumo cuidado las concentraciones de las soluciones, ya que si las mismas superan el índice de 3.5 de absorbancia en el espectrofotómetro los resultados no serán los correctos.
- Los lapsos de tiempo entre medida deben de ser constantes, no deben tener separaciones muy largas
- Debemos tapar muy bien los tubos de ensayo con algodón o gaza, para así mantener la presencia de CO2 en el interior del tubo
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
- Cattaneo, C., Larcer, Ledda (2006). “SIMULACIÓN DE CRECIMIENTO DE MICROORGANISMOS UTILIZANDO EL MÉTODO DE MONTE CARLO”. Universidad Nacional de Santiago del Estero
- Tirado, J., Paredes, C.; Velázquez, G., Torres, J. (2005). CRECIMIENTO MICROBIANO EN PRODUCTOS CÁRNICOS REFRIGERADOS
- Alguilar, C. (2009). Informe de Crecimiento Microbiano
- Erika Fajardo Trujillo2007, “EVALUACIÓN DE MELAZA DE CAÑA COMO SUSTRATO PARA LA PRODUCCIÓN DE SACCHAROMYCES CEREVISIAE” PONTIFICIA UNIVERSIDAD JAVERIANA-FACULTAD DE CIENCIAS BÁSICAS- MICROBIOLOGÍA INDUSTRIAL BOGOTÁ D.C
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