Inmovilizacion de enzimas

OBJETIVOS

• Inmovilizar células de Saccharomyces cerevisiae por atrapamiento en gel de alginato de sodio

• Producir invertasa a partir de las células inmovilizadas en la matriz polimérica

• Evaluar la actividad enzimática de la invertasa producida por la inmovilización

MARCO TEORICO

En los últimos años, la biotecnología ha experimentado grandes avances y, paralelamente sus aplicaciones industriales en la obtención de productos químicos, en la industria alimentaria y farmacéutica.

Los procesos catalizados por enzimas en la industria son cada día más numerosos, ya que presentan una serie de ventajas frente a los catalizadores convencionales no biológicos:

Presentan una gran actividad catalítica;

Muestran una gran especificidad de sustrato (incluso estereoselectividad y regioespecificidad); Son muy activos a temperatura ambiente y presión atmosférica.

A pesar de estas claras ventajas, el empleo de enzimas no se ha generalizado en los procesos químicos industriales debido a que la mayoría de las enzimas no son estables en las condiciones de trabajo. Por otra parte al ser solubles en agua, su separación de los sustratos y productos es difícil, y por tanto, no se pueden reutilizar.

Con la inmovilización de las enzimas se han podido superar estos últimos inconvenientes, permitiendo que el proceso biotecnológico sea económicamente rentable.

ASPECTOS GENERALES SOBRE LA INMOVILIZACIÓN DE ENZIMAS

La inmovilización de enzimas es un proceso en el que se confina o localiza a la enzima en una región definida del espacio, para dar lugar a formas insolubles que retienen su actividad catalítica y que pueden ser reutilizadas repetidamente (1). Posteriormente esta definición se ha ampliado a aquel proceso por el cual se restringen, completa o parcialmente, los grados de libertad de movimiento de enzimas, orgánulos, células, etc. por su unión a un soporte (2).

Como ventajas del empleo de enzimas inmovilizadas podemos destacar (3):

1. El aumento de la estabilidad de la enzima;

2. La posible reutilización del derivado, por lo que disminuyen los costes del proceso.

3. La posibilidad de diseñar un reactor enzimático de fácil manejo y control, adaptado a la aplicación de la enzima inmovilizada. Los diferentes tipos de reactores enzimáticos aparecen en la Figura 1. Estos reactores con enzimas inmovilizadas permiten el empleo de cargas elevadas de enzima, la cual mantendrá su actividad durante más tiempo. Estos sistemas pueden incluir el reciclado, lo que permite la obtención de productos con mayor pureza.

Los principales inconvenientes del proceso de inmovilización son (4):

1. La alteración de la conformación de la enzima respecto de su estado nativo.

2. La gran heterogeneidad del sistema enzima-soporte donde pueden existir distintas fracciones

de proteínas inmovilizadas con un diferente número de uniones al soporte.

3. Siempre suele haber una pérdida de actividad de la enzima durante la movilización.

4. El biocatalizador es más caro que la enzima nativa.

En general, los métodos de inmovilización se suelen clasificar en dos grandes categorías:

1Retención física

2) Unión química

REACTIVOS:

• solución isotónica NaCl 0.85%

• sacarosa al 10 % p/v

• Glucosa oxidada

• Alginato de sodio

• Agua destilada

• Reactivo DNS

MATERIALES:

• 6 tubos de ensayo

• 4 pipetas 1, 2.1, 5 ml

• Espátula

• 2 Beakers de 250 ml

• 2 Pipetas Pasteur

• Gasa estéril

• Espectrofotómetro-celdas

• Plancha de calentamiento

• Centrifuga

PROCEDIMIENTO:

Inmovilización ionotrofica en alginato de calcio

• Tomar 14 ml de medio de cultivo

• Centrifugar 7 ml de medio de cultivo por 30 minutos, descartar el sobrenadante y resuspender el precipitado con el mismo volumen de solución isotónica.

• A 7 ml de medio de cultivo adicione 0.5g de alginato de sodio, mezclar

• Tomar 50 ml de cloruro de calcio en un vaso precipitado de 250 ml

• Adicionar al mismo tiempo por goteo las dos soluciones preparas anteriormente y observar la formación de cristales

• Separar las perlas de cloruro de calcio mediante un proceso de filtración

Verificar la producción de enzimas

En un Erlenmeyer de 150 ml agregue 30 ml de sacarosa, junto con las perlas formadas, llevar a un shaker a 150 rpm y 30°c por 30 minutos. Hacer la prueba de glucosa DNS ( tomar 0.5 ml de la solución anterior, agregar 3 ml de DNS, mezclar, hervir por 10 minutos, agregue 5 ml de agua destilada, leer la absorbancia a 540 nm )

Diluciones para la curva de calibración de azucares reductores

Preparar las siguientes muestras según la tabla:

N° TUBO VOLUMEN PATRON GLUCOSA (ML) VOLUMEN AGUA DESTILADA (ML)

B 0 0.5

1 0.1 0.4

2 0.2 0.3

3 0.3 0.2

4 0.4 0.1

5 0.5 0

• Colocar las soluciones

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